streptomyces spp превышение в крови что это значит

Streptomyces spp превышение в крови что это значит

Исследование, направленное на выявление и подтверждение инфицирования В-гемолитическим стрептококком группы В (Streptococcus agalactiae).

Стрептококк группы В, В-гемолитический стрептококк группы В, СГВ.

GBS, Streptococcus agalactiae.

Какой биоматериал можно использовать для исследования?

Как правильно подготовиться к исследованию?

Общая информация об исследовании:

В большинстве случаев колонизация урогенитального тракта и прямой кишки рассматривается как бессимптомное носительство. К проявлениям инфекции у взрослых относятся бактериемия, инфекции кожи и мягких тканей, пневмония, остеомиелит, инфекции мочевыводящих путей, некротизирующий фасциит, миозит, сепсис, артрит, простатит. Однако стрептококк группы В наиболее опасен для новорождённых детей. До настоящего времени в структуре возбудителей перинатальных инфекций Streptococcus agalactiae занимает одно из ведущих мест. Чаще всего ребенок инфицируется СГВ в родах, передача его от матери ребенку происходит в 37-75 % случаев. Возможна внутриутробная передача СГВ, что может быть причиной выкидышей, замершей беременности, мертворождения. Факторами риска развития инфекции у ребенка, рожденного от матери с СГВ, является возраст беременной (менее 20 лет), выкидыши или медицинские аборты в анамнезе, амнионит, преждевременные роды (до 37 недель), лихорадка в родах, длительный безводный период, задержка внутриутробного развития и др. Чем массивнее колонизация СГВ кожи и слизистых новорождённых, тем больше вероятность развития инфекционного процесса. Стрептококковая инфекция может протекать в двух формах: 1) в первые 48 часов жизни новорождённого и проявляться в виде септицемии или пневмонии; 2) и с более поздним началом и протекать в виде менингита. При молниеносной форме заболевания летальность среди новорождённых достигает 60 %. Для профилактики передачи инфекции от матери к плоду рекомендована антибиотикопрофилактика пенициллином на сроке беременности 35-37 недель у женщин с диагностированной СГВ в мазках из урогенитального тракта и/или прямой кишки.

В настоящее время в России повсеместный скрининг на Streptococcus agalactiae не проводится. В связи с низкой специфичностью проявлений инфекции особое значение в верификации диагноза приобретают лабораторные методы диагностики, к которым относятся бактериоскопический, бактериологический, серологический, молекулярно-биологический (ПЦР) методы. Высокая чувствительность и специфичность ПЦР делают его незаменимым методом верификации инфекции, вызванной Streptococcus agalactiae.

Для чего используется исследование?

Когда назначается исследование?

Что означают результаты?

Референсные значения: не обнаружен.

Положительный результат означает инфицирование В-гемолитическим стрептококком группы В.

Отрицательный результат означает отсутствие инфекции Streptococcus agalactiae.

Кто назначает исследование?

Акушер-гинеколог, уролог, терапевт, врач общей практики, педиатр.

Источник

Стрептококки: чем опасны, как выявлять и лечить

Род бактерий, относящихся к условно патогенной микрофлоре. Носителями различных стрептококков являются практически все люди, включая младенцев. В норме активность микробов подавляет иммунитет. При ослаблении его защиты или получении извне большой заражающей дозы развиваются стрептококковые инфекции: воспалительные заболевания, поражающие слизистые дыхательных путей, ткани внутренних органов, зубы или оболочки мозга. Стрептококки очень устойчивы к факторам внешней среды, способны вырабатывать резистентность к антибактериальным препаратам.

Что такое стрептококки

Род Streptococcus объединяет разнообразные грамположительные микроорганизмы, способные размножаться в анаэробных условиях. Бактерии имеют шаровидную форму, их оболочки чрезвычайно устойчивы к агрессии внешней среды. В высушенных образцах биологических материалов стрептококки сохраняются жизнеспособными более года. Погибают при кипячении, химические дезинфицирующие препараты убивают их в течение 20 минут. По этой причине поверхностного антисептирования часто бывает недостаточно.

Источник распространения стрептококков — носители: зараженные или больные люди. В большой концентрации инфекция содержится на поверхности слизистых оболочек, в жидкостных выделениях: гное, экссудате, слюне. Микробы передаются от человека к человеку воздушно-капельным путем при чихании или кашле. В отличие от вирусов стрептококки разлетаются на относительно небольшое расстояние от источника: в радиусе не более трех метров. Высокая устойчивость бактерий во внешней среде определяет также алиментарный путь заражения: через грязные руки, продукты питания. Стрептококки длительное время сохраняются в молоке, мясных и морепродуктах, которые являются для этой группы инфекций питательную среду.

При размножении в организме человека стрептококки провоцируют интенсивные воспалительные реакции:

микробы группы А чаще поражают слизистые носа, ротовой полости, гортани, бронхов и легких, слухового аппарата, кожи, становятся возбудителями синуситов, тонзиллита, кариеса, ангины, пневмонии, дерматитов, рожи, скарлатины, осложнения ран и ожогов;

стрептококки группы В обычно провоцируют воспаления тканей мочевыделительной системы, суставных структур, соединительной ткани, вызывают цистит, адрекситы, инфекционные нефриты, ревматические процессы, послеродовые осложнения у женщин, эти микробы могут передаваться при половых контактах.

Развитию стрептококковых инфекций способствуют различные системные патологии и повреждения тканей. В том числе: сахарный диабет, злокачественные опухоли, иммунодефицитные, послеоперационные состояния, гиповитаминозы, открытые раны.

Признаки инфицирования

Распространенные симптомы стрептококковых инфекций:

повышение местной или общей температуры тела;

зуд, жжение, сухость в области гортани;

отечность и покраснение миндалин, образование желтого или сероватого налета на слизистых;

заложенность носа с последующими густыми выделениями зеленоватого или желтого цвета;

резкая боль и заложенность слухового прохода, серозные выделения с примесью гноя.

У большинства людей природная высокая склонность к заражению стрептококками. При передаче того или иного вида инфекции воспаляются так называемые входные ворота. Возникают ларингит, фарингит, ангина, отит. При распространении микробов из очагов заражения страдают нижние дыхательные пути, мозг, почки, кишечник и другие органы. К инфекциям вторичной формы можно отнести процессы с включением аутоиммунных механизмов: ревматоидный артрит, стрептококковый васкулит, гломерулонефрит.

Стрептококки — частые провокаторы токсических и некротических осложнений, в том числе тяжелой лихорадки, абсцессов и сепсиса.

Диагностика и лечение стрептококковых инфекций

Специфическая диагностика патогенов требует проведения бактериологического анализа соскобов слизистых, образцов слюны, мочи, мокроты, гнойного отделяемого и других биоматериалов. Кроме того, часто бывает необходимо тестирование крови на антитела к стрептококкам. Лабораторные исследования устанавливают вид возбудителя болезни в течение 20–30 минут.

Кроме этиологических анализов при различных патологиях требуется диагностика общего состояния поражениях органов: обследование у отоларинголога, проведение УЗИ, флюорографии и некоторых других.

Тактику лечения подбирают с учетом выявленных нарушений и устойчивости микробов к медикаментам. Терапию проводят врачи различных профилей: гинекологи, терапевты, пульмонологи, дерматологи. Для подавления активности инфекционной микрофлоры больным назначают курс антибиотиков. Против стрептококков эффективны Азитромицин, Эритромицин,препараты из ряда фторхинолонов: Ципрофлоксацин, Левофлоксацин. Покупать и применять медикаменты важно по назначению врача. Самодеятельность в этом вопросе приводит к развитию суперинфекций. Терапию дополняют также иммуномодулирующими средствами.

Предотвратить развитие стрептококковых заболеваний помогают санитарные меры, закаливание, использование антисептических средств.

Все представленные на сайте материалы предназначены исключительно для образовательных целей и не предназначены для медицинских консультаций, диагностики или лечения. Администрация сайта, редакторы и авторы статей не несут ответственности за любые последствия и убытки, которые могут возникнуть при использовании материалов сайта.

Авторизуйтесьчтобы оставлять комментарии

Возрастные ограничения 18+

Лицензия на осуществление фармацевтической деятельности ЛО-77-02-011246 от 17.11.2020 Скачать.

Источник

Streptococcus spp. (качественный метод)

Описание исследования

Род Streptococcus spp. (стрептококки) – это шаровидные или яйцевидные грамположительные факультативно-анаэробные (не нуждающиеся в кислороде, но и не гибнущие в его присутствии) не образующие спор бактерии семейства Streptococcaceae, паразитирующие в организмах людей и животных. Местами их локации являются дыхательные пути, пищеварительная система (особенно рот, нос, толстый кишечник).

Стрептококки классифицируются по типу гемолиза (разрушения эритроцитов), наблюдаемого при росте бактерий на питательных средах, содержащих кровь животных, на:

К патологически значимым стрептококкам относятся:

Болезни, возбуждаемые стрептококками, отличаются по степени тяжести и месту локализации. К их числу относятся:

Особую опасность стрептококковые инфекции представляют для детей и пожилых людей. Заражение обычно происходит при личном контакте с инфицированным лицом либо же воздушно-капельным путем. Максимальное количество заболевших регистрируется в осенне-зимний период, когда сопротивляемость организма снижается и нередки случаи переохлаждения (это является одной из частых причин поражения инфекцией). Также инфицированию способствуют иммунодефицитные состояния, пристрастие к алкоголю или наркотикам.

Менингит, возникающий в результате заражения Streptococcus, не имеет возрастной избирательности и может поразить человека любых лет. У лиц с очень ослабленным иммунитетом велика вероятность развития таких болезней как:

В данном случае перечисленные выше заболевания имеют гематогенную природу, т.е. они возникают при попадании стрептококка в кровь и занесении ею бактерии в поражаемый орган.

Выявление специфических фрагментов ДНК Streptococcus spp. применяется для определения возбудителя инфекции:

Тестирование проводится методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени.

Аналитические показатели теста:

Подготовка к исследованию

Соскоб урогенитальный (цервикальный канал, влагалище, уретра)

Соскобы у женщин отбираются не ранее пятого дня от начала менструального цикла и не позже пятого дня до предполагаемой даты следующей менструации. Если наблюдаются явные признаки заболевания, отбор пробы проводится непосредственно в день обращения.

Требования по подготовке к тестированию:

Проба не отбирается:

Мочеиспускательный канал (уретра)

У лиц обоего пола проба отбирается не ранее чем через 14 дней после применения антибиотиков местного действия и 30 дней после перорального приема противобактериальных средств.

За неделю до манипуляции рекомендуется прекратить прием всех медицинских препаратов. Если отказ от лечения невозможен, то пациенту необходимо поставить об этом в известность специалиста, направляющего его на обследование.

При отборе эпителиальных клеток из мочеиспускательного канала, манипуляция проводится перед мочеиспусканием или через 2-3 часа после него (при обильных выделениях из уретры у мужчин – через 1 час).

Сперма

Отбор материала с целью диагностики проводится до начала противобактериального, антивирусного и противопаразитарного лечения, химиотерапии, а также до лечебных или диагностических мероприятий в месте предполагаемой локализации агента инфекции. После курса лечения проба отбирается не ранее, чем через 10-14 дней при проведении локальной терапии и через 30 дней после перорального приема антибиотиков.

На анализ собирается порция первой утренней мочи, выделенной не ранее, чем через 2-3 часа после предыдущего (ночного) мочеиспускания. Ее объем должен составлять порядка 20-30 мл. Емкость, используемая для сбора биоматериала – стерильный медицинский контейнер.

Моча собирается либо до проведения химиотерапии или лечения антибиотиками, либо через месяц после окончания курса лечения.

Перед началом манипуляции необходимо тщательно обмыть гениталии. Женщинам желательно воспользоваться гигиеническим тампоном во избежание попадания в пробу слизи из влагалища. Во время менструации материал не собирается.

После наполнения контейнера на треть-половину объема, емкость с мочой плотно закрывается крышкой, дабы избежать ее вытекания.

Доставка биоматериала должна быть организована в течение максимум 6 часов. До отправки в лабораторию моча может храниться как в холодильнике (при t⁰ от +2⁰С – замораживать ее нельзя), так и в комнате, но при этом температура не должна быть выше +25⁰С.

Соскоб эпителиальных клеток с задней стенки глотки

Перед отбором биологического материала необходимо учесть следующее:

Подготовка к взятию соскоба включает в себя:

Перед проведением соскоба необходимо прополоскать рот, используя для этого воду комнатной температуры.

Для получения корректного результата тестирования все эти условия необходимо соблюсти в точности. Лечащий врач может рекомендовать иные условия проведения обследования.

Для проведения тестирования необходимо собрать порцию слюны. Сбор и транспортировка биоматериала осуществляется:

Перед отбором пробы не рекомендуется:

Проведение химиотерапевтического или противобактериального лечения назначается после обследования или до него, но с окончанием курса терапии не менее чем:

Прежде, чем отбирать слюну, необходимо трижды прополоскать рот, применяя для этого физиологический раствор или кипяченую воду.

Для отбора пробы у детей можно использовать шприц без иглы маленького объема. Для анализа достаточно половины микропробирки (1 мл). Слюна отбирается в защечном пространстве.

После сбора материала контейнер необходимо плотно закрыть крышкой. Микропробирка закрывается до щелчка.

Отобранный материал доставляется в лабораторию в день сбора. Если нет возможности отправить его сразу, необходимо поместить контейнер с образцом в холодильник и хранить его там при температуре от 2 до 8⁰С, но не дольше 10-12 часов.

Показания к исследованию

Интерпретация исследования

Данный тест – качественный, результат выдается в формулировках «обнаружено» или «не обнаружено».

Нормой является отсутствие в исследуемой пробе специфических фрагментов ДНК Streptococcus spp.

Результат анализа выдается на бланке лаборатории медицинской компании «Наука». Пример результата по данному анализу представлен ниже:

Ф.И.О.: Иванов Иван Иванович Пол: м Год рождения: 01.01.0000

Дата исследования: 12.12.0000

Источник

Streptomyces spp превышение в крови что это значит

Из не опубликованного

ОБНАРУЖЕНИЕ МАРКЕРОВ НЕКУЛЬТИВИРУЕМЫХ МИКРООРГАНИЗМОВ В ТКАНЯХ ВНУТРЕННИХ ПОЛОВЫХ ОРГАНОВ

Анализ и аналитическое описание Осипова Г.А.

По данным из научной литературы, воспалительные процессы внутренних половых органов составляют 62,5% в структуре гинекологической заболеваемости, причем у 9,5% женщин диагностируют гнойные воспалительные заболевания маточных труб и яичников.

Отмечается, что инфекционные заболевания редко вызываются одним возбудителем, и также возрастает роль условно-патогенных возбудителей. Смешанные инфекции составляют примерно 20-30% в структуре инфекционных заболеваний нижнего отдела половых путей, т.е. почти у каждой третьей пациентки выявляется инфекционный процесс, вызванный несколькими возбудителями. В таких случаях клинические проявления заболевания нетипичны и определяются характером взаимодействия между различными возбудителями, приводящим к угнетению или стимуляции одного вида микроорганизма другим. Гнойные воспалительные заболевания придатков матки относят к смешанным полимикробным инфекциям, важнейшими возбудителями которых, по данным Всемирной организации здравоохранения, являются анаэробно-аэробные микроорганизмы (42,5%), Neiseria gonorrhoeae (37,5%), Chlamydia trachomatis (27,5%), Mycoplasma hominis (до 15%) и др. В последние годы именно анаэробной инфекции уделяют особое внимание, поскольку она приобретает реальную значимость в клинической практике. При острых хронических воспалительных заболеваниях придатков матки и околоматочного пространства наиболее часто (82,5%) выделяют облигатные анаэробные микроорганизмы. По данным В.И. Удовиченко и соавт. (1997), 80% женщин из числа гинекологических больных, обращающихся в женскую консультацию с различными видами вульвовагинитов, цервицитов, уретритов, имеют смешанную бактериально-грибково-трихомонадную инфекцию.

Большинство патогенных организмов являются компонентами нормальной микрофлоры человека, этот факт подтверждает эндогенный путь трансмиссии инфекции. Подавляющее большинство воспалительных заболеваний органов малого таза обусловлено собственной условно-патогенной микрофлорой, ведущая роль в развитии которых принадлежит наиболее вирулентным анаэробам, энтеробактериям и коккам (Сидорова, 2007). В микрофлоре влагалища могут присутствовать гнилостные бактерии родов Bacillus, Proteus, Clostridium, Spirochaeta. По данным Wilkins M.et.al, 1984, количество анаэробов преобладает над аэробами в 10 раз в микробиоценозе вагины.

В свете этих данных представляет интерес изучение состава микробных сообществ матки и придатков, включающих в себя как нормальную, условно-патогенную, патогенную микрофлору. Изучение состава микрофлоры УГТ в норме и патологии в динамике может позволить оценить иммунологический, гормональный статус и гомеостаз макроорганизма. Знание микробных взаимоотношений помогают врачу определить истинную причину инфекционного процесса и подбирать адекватную терапию.

Участие в этом сообществе бактерий, относящихся к разным родам и группам, а также простейших делает затруднительным анализ состава этого сообщества традиционными методами, включающими микробиологический метод селективных сред с биохимическими тестами, и генетическими методами. Традиционные методы идентификации микроорганизмов не являются универсальными и требуют часто длительного времени исполнения.

На этом фоне выглядит перспективным выявление специфических веществ (маркеров) — структурных компонентов микроорганизмов — на фоне биологических жидкостях организма человека, и использование их состава для индикации микроорганизмов с помощью метода газовой хроматографии и масс-спектрометрии (ГХ-МС). Методом ГХ-МС с высокой точностью и чувствительностью определяется качественный и количественный состав микробиоценозов в экологии и медицине по жирным кислотам, оксикислотам, альдегидам и стеринам мембран клеток микроорганизмов и их профилям, относящимся к определенным видам сообщества. Метод детектирования микроорганизмов по ЖК-маркерам сродни генетическому (ПЦР, определение последовательности нуклеотидов 16sРНК, FISH и пр.), поскольку состав жирных кислот детерминирован в ДНК и воспроизводится путем репликации участка генома транспортными РНК и последующего синтеза ЖК по матричным РНК (Уотсон, Молек биол клетки, 5т). Поэтому профиль ЖК бактерий является их визитной карточкой или фингерпринтом как отпечатки пальцев людей (Митрука, 1978). Он так же консервативен, как строение ДНК, но и так же подвержен мутациям под действием факторов окружающей среды. Стабильность набора жирных кислот, составляющих клетки микробов, подтверждается исследованиями в области бактериальной палеонтологии, которые показывают, что до глубины времен в 2,5 млрд лет состав ЖК отдельных микробов и пула их жирных кислот в целом остается постоянным (Shekhovtsova, 2003).

Ранее описаны примеры обнаружения микроорганизмов при инфекционных процессах методом ГХ-МС, в том числе для анализа вагинальной микрофлоры [32] [Вестник РАМН, 1996, № 2]. В результате исследование состава жирных кислот вагинального содержимого показано, что его минорные компоненты относятся к микроорганизмам, колонизирующим половые органы в норме и патологии. Оценена их диагностическая значимость при микробной диагностике хронических вагинитов (Крымцева, 2003, Осипов, 2005).

В настоящей работе этот метод применен для исследования инфекционной составляющей патологического процесса эндометрия матки, приводящего к необходимости оперативного решения проблемы вынашивания плода. Целью исследования является выявление и определение в послеоперационном материале численности анаэробов и других, редко культивируемых микроорганизмов, наряду с традиционными объектами клинической микробиологии.

Методы

В основной группе больных исследованы 24 соскобов из полости матки от пациенток, перенесших операции по поводу проблем беременности.

Режим анализа подробно описан ранее (Осипов, 2010; Годков, 2011). Коротко, он состоит в следующем. Материал в количестве 0,04 г подвергали кислому метанолизу в 0,4 мл 1,2 М HCl в метаноле в течение 45 мин при 80°С. В результате реакции метанолиза жирные кислоты, входящие в состав сложных липидов пробы освобождаются в виде метиловых эфиров. Их экстрагировали в 400 мкл гексана, экстракт высушивали и обрабатывали в 20 мкл N,О-бис(триметилсилил)-трифторацетамида в течение 5 мин при 80 °С для получения триметилсилильных эфиров гидрокси-кислот и стеролов. Смесь эфиров в количестве 2 мкл вводили в инжектор ГХ-МС системы HP-5880/5975 Agillent Technologies (США) в модификации «Микробиологический анализатор «МАЭСТРО» ООО Интерлаб (Россия). Для управления и обработки данных использовали штатные

программы прибора. Хроматографическое разделение пробы осуществляли на капиллярной колонке с метилсиликоновой привитой фазой HP-5ms Agillent Technologies. Длина колонки 25м, внутренний диаметр 0.25 мм. Режим анализа — программированый, скорость нагрева термостата колонки — 5 град/мин в диапазоне 130 — 320°С.

Площади пиков маркеров на масс-фрагментограммах интегрировали автоматически по заданной программе. Затем эти данные вводили в программу расчета, подготовленную в электронных таблицах EXCEL по технологии масс-спектрометрии микробных маркеров (МСММ, Разрешение Росздравнадзора ФС 2010/038 от 24.02.2010) (Осипов, 2010). Для количественного расчета использовали дейтерированную тридекановую кислоту в качестве внутреннего стандарта и собственный банк данных состава жирных кислот клинических изолятов микроорганизмов.

Ошибка количественных измерений численности микроорганизмов из-за погрешности в подготовке проб и анализа, несоответствия состава жирных кислот чистых культур банка данных и изучаемого сообщества in situ может составлять 20%.

Метод характеризуется следующими показателями:

· Определение более 50 микроорганизмов одновременно в одном анализе

· Время анализа – 2,5 часа

· Чувствительность 103-104 клеток в пробе

· Селективность – до вида при наличии маркера

· Анализ непосредственно в материале без высевания или подращивания микроорганизмов

· Не требует биологических и биохимических тестовых материалов – культуральных сред, ферментов, тестовых субстратов, праймеров и т.п.

Результаты измерения концентраций микробных маркеров в соскобах матки с последующей реконструкцией микробного сообщества позволили определить состав микст-инфекции в очаге поражения (табл 1).

Результаты анализа состава локальной микст-инфекции в соскобах из полости матки (N=24). Данные в размерности [клеток/мл х105]

Из 54 таксонов микроорганизмов, контролируемых в процессе анализа, в итоговую таблицу выведены 48, из которых 38 показывают избыточный рост (инфекцию), Клинически значимыми считали более чем двойное превышение нормы на основании статистического распределения концентрации маркеров микроорганизмов у больных и здоровых людей (Белобородова, 1999). Такие изменения отмечены в таблице затенением клетки. Как видно, инфицирование каждого исследованного материала включает несколько (до двадцати двух, Пожарская, GBT-1559) таксонов микроорганизмов. Это подтверждает тезис литературного обзора о смешанном характере инфекции половых органов женщин. Данные таблицы 1 подтверждают также сформировавшееся представление о доминировании анаэробов. Их доля составляет 70-90% по нашим измерениям и соответствует оценке других авторов. В отличие от предыдущих работ наши измерения носят количественный характер, что позволяет выявить микробные доминанты воспалительного процесса на одной и той же пробе инфицированного материала, а также сопоставлять данные анализов разных пациентов. В данном случае доминантами у большинства пациентов оказались бактерии видов Propionibacterium/Cl. subterminale, представителей родов Eubacterium, Clostridium, Lactobacillus, Ruminococcus. Такой тип инфекции показан на рис 1, где в графическом выражении лучше иллюстрируется количественные изменения относительно нормы и других составляющих микробного сообщества. За неимением возможности оценить уровень колонизации слизистых оболочек полости матки и придатков у здоровых женщин, мы приняли в качестве максимально возможного уровня данные нормы по крови. Тем более, что проба носит явно насыщенный кровяной характер.

По кратности превышения нормы выделяются бактерии кишечной группы (рис 1), для которой наблюдается многократное увеличение концентрации маркеров клостридий группы Clostridium ramosum, групп Eubacterium/Cl. сoccoides, Propionibacterium/Cl. subterminale в соскобе из полости матки по сравнению с их уровнем в крови в норме. Пересчетное значение численности этих микроорганизмов по технологии МСММ достигает уровня 10 9 – 10 10 клеток\мл. Расчетная численность C. ramosum в десяти случаях превышает норму в десять-двадцать раз. Из трудно культивируемых микроорганизмов, которые позволяет выявить масс-спектрометрический метод, следует отметить еще анаэробы Streptococcus mutans, численность которых в 11 пробах более 5 раз выше нормальной. В большинстве случав в составе микст-инфекции присутствуют анаэробные актинобактерии Actinomyces viscosus.

Число случаев более чем двукратного превышения расчетной численности микроорганизмов соскобах из полости матки по сравнению с нормой крови

Здесь под C. ramosum подразумевается целая группа клостридий, объединенная общим маркером – специфической ненасыщенной жирной кислотой ω9-гексадеценовой. Это C. inocuum, C. clostridieforme, C. subterminale, C. sordellii, C. septicum, C. paraputrificum, C. celatum, C. cochlearium, C. limosum, C. fallax, C. difficile. Другая группа Clostridium 12:0group имеет общий маркер – додекановую кислоту и (С12:0) и включает виды Clostridium perfringens, С. putrefacience, C. hystolyticum, C. tetani. Свои маркеры имеют клостридии других видов: C. histolyticum, C. coccoides вместе с большой группой родственных эубактерий (род Eubacterium), а также C. propionicum, C. perfringens и C. subterminale вместе с частью видов Propionibacterium. В сумме клостридии составляют около 74% микробного сообщества, то есть, как принято в хирургии, это анаэробная клостридиальная инфекция (АКИ).

По данным реконструкции микробного сообщества эндометрия по маркерам в соскобе из полости матки численность ряда микроорганизмов многократно превышает таковую в крови той же пациентки (Рис 2). Основываясь на данных предыдущих исследований методом МСММ (Лазебник, 2008; Прохорова, 2012) мы полагаем, что имеет место транслокация микроорганизмов кишечника по крови и/или восходящая инфекция из вагины с последующим размножением уже в самом органе – матке.

Рис.2. Сравнение состава реконструкции микробного сообщества в соскобе матки и крови одной и той же пациентки методом МСММ.

Таким образом, применение метода масс-спектрометрии микробных маркеров позволило дополнить картину инфицирования верхних половых органов женщин таксонами, которые оказались доминирующими в микробном сообществе, а также расширить список участников инфекционного процесса. Ими оказались, как и предполагалось другими исследователями, представители кишечной микробиоты. Кроме того, в отличие от предыдущих исследований, мы дали их количественную оценку, показав рейтинговый ряд агентов инфекции и подтвердив доминирование анаэробов родов Propionibacterium, Eubacterium, Clostridium и Bifidobacterium. Вряд ли следует сразу зачислять в патогенны доминантные микроорганизмы кишечной микробиоты: бифидобактерии, лактобациллы,эубактерии и пропионобактерии. Также оставим за скобками клостридии группы C. ramosum, поскольку их роль в организме явно выглядит двоякой. Пока не будем осложнять задачу их транслокацией в полость матки. Попробуем выделить явных патогенов.

Для этого исключим из таблицы перечисленные выше кишечные доминантные бактерии и микробы, которые в норме, и оставим те, что превышают норму, а также те, что часто встречаются в бакпосеве – для возможного сопоставления.

Тогда для соскоба GBT-1559 получим следующую сокращенную таблицу (рис 3):

Рис. 3. Наиболее вероятные агенты инфекции эндометрия, за исключением микробов, доминирующих в микробиоте кишечника.

Это реальные кандидаты в агенты инфекции, которая препятствуют нормальному протеканию беременности.

Если посмотреть в таком ключе остальные анализы соскобов, то будет видно, что везде такими агентами являются обязательно Clostridium perfringens, H. pylori, одна или несколько актинобактерий родов Streptomyces, Nocardia, Pseudonocardia. В примере на рисунке 3 это Actinomyces viscosus, Nocardia asteroids и Rodococcus. В этой группе известные разрушители клеток животных. Они обнаружили себя в амбулаторной практике в качестве агентов, препятствующих оплодотворению и развитию яйцеклетки в плод, в том числе при экстракорпоральном оплодотворении.

Тем не менее, нельзя исключать участие в патогенезе и «хороших» бактерий: лактобацилл, бифидобактерий, пропионобактерий и части клостридий. Можно найти десятки документированных случаев участия в инфекционном процессе любого микроба, обитающего в теле человека. В том числе лактобацилл и бифидобактерий. Особенно лактобациллл. Действительно, по литературным данным они зафиксированы как возбудители при эндокардите, бактериемии, бактериурии, перитонитах, абсцессах и менингитах. Наиболее часто выявляются L. casei и L. rhamnosus (Cannon, 2005). Eubacterium – родственные клостридиям микроорганизмы, являющиеся одними из основных обитателей кишечника. Условные патогены с развитой системой видов и штаммов с универсальными свойствами. Эубактерии участвуют в качестве основных агентов во многих воспалительных процессах и синдромах: воспаления неизвестной этиологии, себорея, атопический дерматит, кахексия, воспаление кишечника, глютеновая энтеропатия, воспаление десен, средиземноморская семейная лихорадка, Yang Xiao-xia’s “mysteriuos disease”, синдром раздраженного кишечника, воспаление легких, бактеремия, хронический синусит, болезнь Крона, периодонтит, артрит, простатит, муковисцидоз, эндометрит, эндокардит, неспецифический вагинит, врожденный порок сердца и другие. Основными функции эубактерий в организме человека являются: образование водорода, высвобождение гистамина, биотрансформация желчных кислот, индуцирование продукции провоспалительных цитокинов и TNF-alfa, а также противовоспалительного цитокина IL-10 (как ЛПС или клеточные токсины Грам+ патогенов) и другие. Патогенность клостридий более известна в клинической практике. Они обладают широким набором экзотоксинов. У C.perfringens их насчитывается двенадцать. С. ramosum обладает близкой активностью, в том числе также может вызывать газовую гангрену, язвенный и некротизирующий колиты. Они известны как агенты септицемии, нефропатии, бактериемии и менингита (Brook, 1995; в Атласе, 2003).

Анкирская А. С. Бактериальный вагиноз. Акушерство и гинекология. №3 2005 с. 10-13

Анкирская А.С., Прилепская В.Н., Байрамова Г.Р. Бактериальный вагиноз: особенности клинического течения, диагностика и лечение. // Рус мед журнал, 1999; 5: 276–82.

Атлас по медицинской микробиологии, вирусологии и иммунологии. Под ред А.А. Воробьева и А.С. Быкова. – М., Медицинское информационное агентство, 2003. – 236 с.: ил.

Годков М.А., Осипов Г.А., Федосова Н.Ф., Лядов К.В. Возможности масс-спектрометрии микробных маркеров в лабораторном мониторинге дисбиозов и инфекций. Справочник заведующего КДЛ. 2011, № 7, С. 35-44.

Лазебник Л.Б., Винницкая Е.В., Осипов Г.А. Дроздов В.Н., Петраков А.В. Новые подходы к диагностике спонтанного бактериального перитонита при циррозе печени. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. №2. 2008. стр. 32-39.

Крымцева Т.А., Осипов Г.А., Бойко Н.Б., Соколов Я.А., Демина А.М., Радюшина Т.В., Осипов Д.Г.. Минорные жирные кислоты биологических жидкостей урогенитальных органов и их значимость в диагностике воспалительных процессов. Журн. Микроб. Эпидем. Иммун. 2003, № 2: 92-101

Митрука Б.М. Применение газовой хроматографии в микробиологии и медицине. М. Медицина, 1978.

Муравьева В. В. Микробиологическая диагностика бактериального вагиноза у женщин репродуктивного возраста // Дисс. Канд. мед. наук., Москва, — 1997.

Осипов Г.А. Хромато-масс-спектрометрический анализ микроорганизмов и их сообществ в клинических пробах при инфекциях и дисбиозах. / В книге: Химический анализ в медицинской диагностике.- М.: Наука, 2010.- С.293-368.

Осипов Г.А., Крымцева Т.А., Осипов Д.Г., Столярова О.Н. Функциональные изменения жирнокислотного состава урогенитальных жидкостей организма человека при дисбиозах. Прометей. Москва, 2005

Прохорова Е. С., Выборнов Д.Ю., Бойко Н.Б., Федосова Н.Ф., Лядов К.В., Осипов Г.А. Изучение эндогенного пути инфицирования посттравматических артритов у детей с применением масс-спектрометрии микробных маркеров. Детские инфекции. 2012, том 11, № 1, С. 55-60

Journal of General Microbiology (1990), 136, 241-247.

JP Cannon, TA Lee, JT Bolanos, and LH Danziger. Pathogenic relevance of Lactobacillus: a retrospective review of over 200 cases. Eur J Clin Microbiol Infect Dis, January 1, 2005; 24(1): 31-40

Shekhovtsova N.V., Osipov G.A., Verkhovtseva N.V., Pevzner L.A. Analysis of lipid biomarkers in rocks of the Archean crystalline basement //Proceedings of SPIE.- 2003.- Vol.4939.- P. 160 – 168

Wilkins M., Thin R. N., Tabaqchall S. Quantitave bacteriology of the vaginal flora in genital disease // J. Med. Microbiol. 1984, 18:2, 217-231.

В этом можно усматривать специфику инфицирования внутренних половых органов, так как при вагинитах в слизистой влагалища их рост хотя и происходит, но не в такой степени. Для вагины более характерна инфекция Clostridium perfringens. При воспалениях, напоминающих по клиническим проявлениям кандидоз, их численность до 30 крат превышают уровень колонизации слизистой оболочки в норме.

Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия, Том 3, N 1, 2001

стр. 39-47

Экологические аспекты чувствительности к антибиотикам анаэробных бактерий

М. Качерес 1,2 , К.Э. Норд 1 , А. Веинтрауб 1

Источник